實驗原理

細胞凍存是細胞保存的主要方法之一。利用凍存技術將細胞置于-196~C液氮中低溫保存，可以使細胞暫時脫離生長狀態而將其細胞特性保存起來，這樣在需要的時候再復蘇細胞用于實驗。而且適度地保存一定量的細胞，可以防止因正在培養的細胞被污染或其他意外事件而使細胞丟種，起到了細胞保種的作用。除此之外，還可以利用細胞凍存的形式來購買、寄贈、交換和運送某些細胞。 細胞凍存時向培養基中加入保護劑——終濃度5%~15%的甘油或二甲基亞砜(DMSO)，可使溶液冰點降低，加之在緩慢凍結條件下，細胞內水分透出，減少了冰晶形成，從而避免細胞損傷。標準冷凍速度開始為-1 到 -2℃/min，當溫度低于-25℃時可加速，到-80℃之后可直接投入液氮內(-196℃)。

目前常用的保護劑為二甲亞砜(DMSO)和甘油，它們對細胞無毒性，分子量小，溶解度大，易穿透細胞。

實驗材料

儀器：液氮罐、凍存管(塑料螺口凍存管或安瓿瓶)、離心管、吸管、離心機等

試劑：0.25%胰酶、培養基、含保護劑的培養基(即凍存液)

附：凍存液配制：培養基加入甘油或DSMO，使其終濃度達5-20%。保護劑的種類和用量視不同細胞而不同。配好后4℃下保存。

實驗步驟

1.消化細胞，將細胞懸液收集至離心管中。

2.1000rpm離心10分鐘，棄上清液。

3.沉淀加含保護液的培養，計數，調整至5×106/ml左右。

4.將懸液分至凍存管中，每管1ml。

5.將凍存管口封嚴。如用安瓿瓶則火焰封口，封口一定要嚴，否則復蘇時易出現爆裂。

6.貼上標簽，寫明細胞種類，凍存日期。凍存管外拴一金屬重物和一細繩。

7.按下列順序降溫：室溫→4℃(20分鐘)→冰箱冷凍室(30分鐘)→低溫冰箱(-30℃ 1小時)→氣態氮(30分鐘)→液氮。

注意：操作時應小心，以免液氮凍傷。液氮定期檢查，隨時補充，不能揮發干凈，一般30立升的液氮能用1～1.5月。